Selección de medios de biofiltro para lobina negra- Características de la biopelícula y rendimiento del crecimiento.
Lobina negra (Micropterus salmoides), también conocida como lubina de California, pertenece a Actinopterygii, Perciformes, Centrarchidae, Micropterus. Es originaria de California, EE. UU., y tiene ventajas como un rápido crecimiento, un sabor delicioso, una rica nutrición y un alto valor económico. Se ha convertido en una de las especies acuícolas de agua dulce más importantes en China. En los últimos años, en un contexto de transformación y mejora de la pesca y del vigoroso desarrollo de la pesca digital e inteligente, ha ido surgiendo gradualmente la acuicultura de recirculación industrializada. El modo de acuicultura de la lobina negra también está cambiando del cultivo tradicional en estanques al modo de acuicultura de recirculación ecológica y eficiente. La acuicultura con recirculación tiene ventajas como el ahorro de agua y tierra, una alta densidad de población y una gestión conveniente. A través de métodos y equipos físicos, biológicos y químicos, los sólidos suspendidos y las sustancias nocivas del cuerpo de agua se eliminan o se convierten en sustancias inofensivas, de modo que la calidad del agua satisfaga las necesidades de crecimiento normal de las especies cultivadas, logrando así el reciclaje del agua en condiciones de acuicultura de alta-densidad. Ha logrado buenos beneficios económicos en múltiples especies cultivadas.
Actualmente, la investigación sobre la acuicultura recirculante de la lobina negra se centra principalmente en la reproducción, la nutrición del alimento, la selección de cepas, la alimentación precisa, los cambios en el entorno acuático y la calidad nutricional. La investigación sobre la acuicultura industrializada con recirculación de lobina negra en interiores se centra principalmente en el cultivo de peces juveniles de gran-tamaño, y la cría de peces adultos de ciclo completo-no se ha promovido ampliamente. El principal desafío que enfrenta la acuicultura con recirculación de lobina negra es mantener un buen ambiente acuático en condiciones de alta-densidad para garantizar el crecimiento normal de las especies cultivadas. El tratamiento del agua es el núcleo de la acuicultura con recirculación, y los medios biofiltrantes eficientes para el tratamiento del agua son la base del sistema de tratamiento del agua. Aunque hay muchos informes sobre la purificación del agua mediante medios de biofiltro, faltan informes específicamente sobre la acuicultura de recirculación industrializada de lobina negra, especialmente en relación con la selección de medios de biofiltro eficaces para el tratamiento del agua, la estructura de la comunidad microbiana de las biopelículas en diferentes medios de biofiltro, los efectos del tratamiento y los impactos en el crecimiento de las especies cultivadas. Se seleccionaron tres tipos de medios de biofiltro, entre los cuales los medios de biofiltro de esponja cuadrada y de bola de lecho fluidizado son de bajo costo y sencillos de operar, y se han utilizado ampliamente en el tratamiento del agua de cola de la acuicultura; Mutag Biochip 30 (abreviado como Biochip) es un nuevo tipo de medio de biofiltro que ha surgido en los últimos años, con ventajas de resistencia al impacto y larga vida útil, pero no se han informado sus efectos de aplicación práctica. Para este propósito, se utilizó tecnología de secuenciación de alto rendimiento 16S rDNA para analizar la situación de formación de biopelículas de los tres medios de biofiltro de tratamiento de agua, mientras se analizaba simultáneamente la situación de crecimiento de la lobina negra, con el fin de descartar medios de biofiltro de tratamiento de agua prácticos y proporcionar medios de tratamiento de agua eficientes para la acuicultura de recirculación industrializada de lobina negra.
1. Materiales y Métodos
1.1 Materiales de prueba
Los medios de biofiltro seleccionados para esta prueba fueronesponja cuadrada, biochip, ybola de lecho fluidizado, como se muestra enFigura 1. El material de esponja cuadrada es poliuretano, con forma de cubo con una longitud de lado de 2,0 cm y una superficie específica (3,2~3,5) × 10⁴ m²/m³. El material del Biochip es polietileno, con forma de círculo con un diámetro de 3,0 cm, un espesor de aproximadamente 0,11 cm y una superficie específica de 5,5×10³ m²/m³. El material de la bola de lecho fluidizado es polietileno, con una superficie específica efectiva de 500~800 m²/m³.
1.2 Agrupación experimental
El grupo de tratamiento de medios de biofiltro de esponja cuadrada se estableció como grupo T1, la biopelícula de medios correspondiente se etiquetó como B1 y el agua de acuicultura correspondiente se etiquetó como W1; el grupo de tratamiento del medio de biofiltro Biochip se estableció como grupo T2, la biopelícula del medio correspondiente se etiquetó como B2 y el agua de acuicultura correspondiente se etiquetó como W2; el grupo de tratamiento con medio de biofiltro de bola de lecho fluidizado se configuró como grupo T3, la biopelícula de medio correspondiente se etiquetó como B3 y el agua de acuicultura correspondiente se etiquetó como W3.
1.3 Sistema de Acuicultura
El experimento se llevó a cabo en un sistema de acuicultura de recirculación en la Base Experimental Integral de Bali del Instituto de Pesca de Agua Dulce de Zhejiang.Había 9 tanques de cultivo en total, volumen 500 L, volumen efectivo de agua 350 L. El tanque de biofiltro estaba hecho de un acuario de plástico que medía 80 cm de largo, 50 cm de ancho y 50 cm de alto, volumen 200 L, volumen efectivo de agua 120 L.. El tanque de cultivo y el tanque de biofiltro se conectaron mediante una bomba de agua para formar una circulación interna, caudal de 3 ~ 4 L/min, con aireación para oxigenación, oxígeno disuelto en agua mantenido por encima de 5 mg/L. Los medios de biofiltro se agruparon aleatoriamente, cada tipo de medio de biofiltro tenía 3 réplicas, cada tanque de biofiltro se cargó con 2,0 kg de medio de biofiltro y, al mismo tiempo, se suspendió una fuente de carbono de liberación lenta-. Durante el período de cultivo de biopelículas se cambió diariamente el 10% del agua.Indicadores iniciales de calidad del agua: Nitrógeno total (TN) 9,41 mg/L, Fósforo total (TP) 1,02 mg/L, Nitrógeno amoniacal (TAN) 1,26 mg/L, Nitrógeno nitrito (NO₂⁻-N) 0,04 mg/L, Índice de permanganato (DQOₘₙ) 3,73 mg/L.
1.4 Prueba de manejo de peces y cultivos
La lobina negra se utilizó como especie cultivada. Antes del inicio de la prueba, se aclimataron en agua recirculante durante 7 días.La prueba se realizó del 11 de agosto de 2022 al 22 de septiembre de 2022 y tuvo una duración de 42 días.. Se seleccionaron lubinas sin lesiones en la superficie, sanas y vivaces para agrupar, se sembraron 60 peces en cada tanque de cultivo, se alimentaron dos veces al día, los horarios de alimentación fueron las 07:00 de la mañana y las 16:00 de la tarde, la cantidad de alimentación diaria representó aproximadamente el 1,0% ~ 1,5% de la masa corporal total de los peces. La masa corporal inicial de los peces de prueba fue (20,46 ± 0,46) g.
1.5 Recogida de muestras
Se recolectaron muestras de agua del tanque del biofiltro cada 2 días, registrando indicadores como la temperatura del agua, el oxígeno disuelto, el valor del pH y midiendo el nitrógeno amoniacal y el nitrógeno nitrito. Se registraron la cantidad de alimento, la masa corporal de los peces al inicio y al final del experimento y la tasa de supervivencia. Después del experimento, se recogió 1 litro de agua de cada tanque de cultivo utilizando bolsas de recolección de agua estériles, se filtró a través de una membrana filtrante de 0,22 µm y se almacenó en un congelador a -80 grados para su uso posterior. Se tomaron asépticamente muestras de medios de biofiltro de 0,5 g de cada tanque de biofiltro, se almacenaron en agua destilada esterilizada, se agitaron vigorosamente para desalojar los microorganismos de la superficie de la biopelícula, luego se filtraron a través de una membrana de filtro de 0,22 µm y se almacenaron en un congelador a -80 grados para su uso posterior.
1.6 Métodos de medición
1.6.1 Medición de la calidad del agua
La temperatura del agua, el oxígeno disuelto y el valor del pH se detectaron utilizando unAnalizador de calidad del agua portátil HACH Hq40d. La concentración de nitrógeno amoniacal se midió utilizando el método espectrofotométrico del reactivo de Nessler. La concentración de nitrógeno nitrito se detectó mediante el método espectrofotométrico de naftiletilendiamina del ácido clorhídrico.
1.6.2 Medición del desempeño de la acuicultura
Las fórmulas de cálculo para la tasa de aumento de peso, la tasa de conversión alimenticia y la tasa de supervivencia de los peces son las siguientes.
l Tasa de aumento de peso= (Masa corporal final del pez - Masa corporal inicial del pez) / Masa corporal inicial × 100%;
l Relación de conversión de alimento= Consumo de alimento/Aumento de peso;
l Tasa de supervivencia= (Número de peces al final del experimento / Número inicial de peces al inicio del experimento) × 100%.
1.6.3 Secuenciación microbiana de alto-rendimiento
El ADN bacteriano se extrajo del agua y la biopelícula utilizando un kit de extracción de ADN bacteriano (OMEGA Biotech, EE. UU.). Se utilizaron los cebadores específicos 338F (5'–ACTCCTACGGGAGGCAGCAG–3') y 806R (5'–GGACTACHVGGGTWTCTAAT–3') para amplificar las regiones V3 y V4 del ADNr 16S bacteriano. La PCR utilizó el sistema de reacción TransGen AP221-02: 4 µL de tampón FastPfu 5×, 2 µL de dNTP de 2,5 mmol/L, 0,4 µL de polimerasa FastPfu, 0,8 µL de cada uno de cebadores directos e inversos de 5 µmol/L, 0,2 µL de BSA, 10 ng de plantilla de ADN, suplementado con ddH₂O a 20 µL. Condiciones de reacción de PCR: 95 grados durante 3 min; 95 grados durante 30 s, 53 grados durante 45 s, 72 grados durante 1 min, 28 ciclos; Extensión de 72 grados durante 10 min. La amplificación por PCR se realizó en un instrumento de reacción de PCR 9700 (Applied Biosystems® GeneAmp®, EE. UU.). Los productos de la PCR se purificaron utilizando perlas y luego se sometieron a secuenciación. La secuenciación se encargó a Shanghai Majorbio BioPharm Technology Co., Ltd.
1.6.4 Análisis de la diversidad microbiana
Los datos sin procesar obtenidos de la secuenciación se empalmaron primero, seguido del filtrado de control de calidad de las lecturas y el efecto de empalme, y la corrección de la dirección de la secuencia, lo que dio como resultado datos optimizados. Después de normalizar los datos limpios finalmente obtenidos, se realizaron análisis de agrupamiento OTU (Unidades taxonómicas operativas) y análisis taxonómicos con una similitud del 97 %. Los histogramas de las muestras se dibujaron usando Excel y los mapas de calor se dibujaron usando Majorbio Cloud Platform.
1.7 Análisis de datos
Se utilizó el software estadístico SPSS 16.0 para el análisis de significancia de las diferencias y el método de Duncan en análisis de varianza (ANOVA) para comparaciones múltiples.
2. Resultados y análisis
2.1 Tiempo de formación de biopelículas de diferentes medios de biofiltro
Como se muestra enFigura 2,En condiciones naturales de formación de biopelículas, el contenido de nitrógeno amoniacal en el agua del tanque del biofiltro mostró una tendencia de rápido aumento seguido de una disminución gradual.El contenido de nitrógeno amoniacal.en el agua del tanque del biofiltro correspondiente a la esponja cuadrada alcanzó su pico a los 17 días, con 8,13 mg/L, luego disminuyó gradualmente,alcanzando el nivel más bajo a los 41 días, permaneciendo luego alrededor de 0,20 mg/L, lo que indica queel tiempo de formación de biopelícula para la esponja cuadrada fue de aproximadamente 17 días. Los cambios en el contenido de nitrógeno amoniacal en el agua de los tanques de biofiltro correspondientes al Biochip y a la bola de lecho fluidizado fueron básicamente los mismos, mostrando cambios fluctuantes. El pico de nitrógeno amoniacal apareció a los 21 días, en 7,88 mg/L y 7,57 mg/L respectivamente, lo que indica queel tiempo de formación de biopelícula para Biochip y los medios de biofiltro de bolas de lecho fluidizado fue de aproximadamente 21 días. El contenido de nitrógeno amoniacal.en los tanques de biofiltro correspondientes aEstos dos medios cayeron al nivel más bajo con 43 días y 45 días respectivamente..
2.2 Cambios en el valor del pH del agua en diferentes tanques de cultivo
DeFigura 3, se puede observar que el valor de pH inicial del agua de cultivo era 7,3. A medida que se prolongó el tiempo de cultivo, el valor del pH del agua en cada tanque de cultivo mostró una tendencia a la baja. Después de 12 días, el valor del pH de todos los tanques de cultivo era inferior a 6,0, lo que es desfavorable para el crecimiento de las especies cultivadas.Por lo tanto, después de 12 días de formación de biopelícula, se debe prestar atención a ajustar el valor del pH del agua del tanque de cultivo..
2.3 Análisis de la composición de la comunidad microbiana en biopelículas de diferentes medios de biofiltro y en agua
2.3.1 Composición de la comunidad microbiana a nivel de filo
Como se muestra enFigura 4,a nivel de filo, las bacterias dominantes en las biopelículas de los tres medios de biofiltro eran las mismas, siendo todas Proteobacteria, Actinobacteriota, Bacteroidota y Chloroflexi. Sus abundancias relativas combinadas fueron 68,96%, 64,74% y 65,45% respectivamente. Las bacterias dominantes en el agua de cultivo correspondiente eran diferentes. La bacteria dominante en W1 fue Actinobacteriota, con una abundancia relativa del 64,66%. Las bacterias dominantes en W2 y W3 fueron Proteobacteria, con abundancias relativas de 34,93% y 50,10% respectivamente.
Fig. 4 Composición comunitaria de bacterias en diferentes biopelículas y agua a nivel de filo
2.3.2 Composición de la comunidad microbiana a nivel familiar
Como se muestra enFigura 5, en las biopelículas de los tres medios, alrededor del 48% de las bacterias eran comunidades bacterianas con abundancias relativas inferiores al 3%. Las bacterias dominantes de B1 y B2 fueron las mismas, siendo ambas Xanthomonadaceae, con abundancias relativas de 11,64% y 9,16% respectivamente; la bacteria dominante de B3 fue JG30-KF-CM45, con una abundancia relativa del 10,54%. Las bacterias dominantes en el agua de cultivo eran diferentes de las del medio de biofiltro. Microbacteriaceae fue la bacteria absolutamente dominante en el S1, con una abundancia relativa de 62,10%; las bacterias dominantes en W2, además de Microbacteriaceae (13,82%), también incluyeron cierta proporción de Rhizobiales (8,57%); la bacteria dominante en W3 fue Rhizobiales, con una abundancia relativa de 38.94%, seguida de Flavobacteriaceae, con una abundancia relativa de 15.89%.
Se contaron las 50 especies principales a nivel de género.. Después de procesar los valores numéricos, los cambios de abundancia de diferentes especies en las muestras se mostraron a través del gradiente de color de los bloques de color. Los resultados se muestran enFigura 6. Leifsonia fue la bacteria dominante en W1, con una abundancia relativa de 56,16%; las bacterias dominantes en W2 fueron Leifsonia (10,30%) y Rhizobiales_Incertae_Sedis (8,47%); la bacteria dominante en W3 fue Rhizobiales_Incertae_Sedis, con una abundancia relativa de 38.92%. Entre las bacterias identificables en las biopelículas, Thermomonas fue el género dominante en B1, con una abundancia relativa del 4,71%; los géneros dominantes en B2 y B3 fueron Nitrospira, con abundancias relativas de 4,41% y 2,70% respectivamente.
Fig. 5 Composición comunitaria de bacterias en diferentes biopelículasy agua a nivel familiar
Fig. 6 Mapa de calor de la composición de la comunidad bacteriana en diferentes biopelículas y agua a nivel de género
2.4 -Análisis de diversidad de comunidades microbianas en biopelículas de diferentes medios de biofiltro y en agua
Como se muestra enTabla 1, el índice de Shannon de las comunidades microbianas en las biopelículas de diferentes medios fue mayor que el del agua de cultivo correspondiente, mientras que el índice de Simpson fue lo contrario. Al analizar el agua de cultivo correspondiente, el índice de Shannon de la comunidad bacteriana de W2 fue el más alto, significativamente mayor que el de W1 y W3, mientras que el índice de Simpson fue significativamente menor que el de W1 y W3, lo que indica que su -diversidad fue la más alta. A diferencia de la -diversidad del agua de cultivo, aunque el índice de Shannon de la comunidad microbiana bacteriana en los medios B2 fue el más grande y el índice de Simpson fue el más pequeño, no hubo diferencias significativas entre los tres medios de biofiltro. La cobertura de secuenciación de todas las muestras fue superior a 0,990, lo que indica que la profundidad de secuenciación podría reflejar el nivel real de las muestras.
2.5 Efectos de diferentes medios de biofiltro sobre el crecimiento de la lobina negra
Tabla 2muestra la situación de crecimiento de la lobina negra en los diferentes grupos de medios biofiltrantes. Después de 44 días de cultivo, la masa corporal final y la tasa de aumento de peso de la lobina negra en el grupo de cultivo de esponja cuadrada fueron significativamente más altas que las de los grupos de bolas de lecho fluidizado y Biochip, y la tasa de conversión alimenticia fue significativamente menor que la de los otros grupos. La tasa de supervivencia de la lobina negra en cada grupo fue superior al 97%, sin diferencias significativas entre los grupos.
3. Conclusión y discusión
3.1 Tiempo de formación de biopelículas de diferentes medios de biofiltro
Las biopelículas se adhieren a la superficie de los medios de biofiltro. El material, la estructura y la superficie específica del medio biofiltrante son los principales factores que afectan la formación de biopelículas. Hay dos métodos comunes para el cultivo de biopelículas: el método de formación de biopelículas naturales y el método de formación de biopelículas inoculadas. Los diferentes métodos de formación de biopelículas afectan el tiempo de maduración de la biopelícula. Hu Xiaobing et al. utilizaron cuatro métodos diferentes para la formación de biopelículas, y los resultados mostraron que cuando se utilizaron métodos como agregar quitosano, iones de hierro e inocular con lodo vertido para la formación de biopelículas, el tiempo de maduración de la biopelícula fue más corto que el del método de formación de biopelícula natural. Aunque la adición de microorganismos benéficos o sustancias activas puede acortar el tiempo de formación de la biopelícula, existen problemas como la dificultad para obtener el inóculo, la construcción compleja del proceso y el alto costo. Guan Min et al., en condiciones de bajo contenido de materia orgánica, utilizaron directamente agua cruda para la formación de biopelículas, y el tanque del biofiltro se puso en marcha con éxito mediante la formación natural de biopelículas después de aproximadamente 38 días. El resultado de esta investigación es similar a los resultados de este estudio. Los resultados de este estudio muestran que bajo las mismas condiciones de formación de biopelículas, el tiempo de formación de biopelículas de la esponja cuadrada fue más corto que el de los otros dos medios de biofiltro. Esto puede estar relacionado con la gran superficie específica, la fuerte hidrofilicidad y la facilidad de unión de la biopelícula de la esponja cuadrada. La superficie específica de la esponja cuadrada alcanza los 32.000~35.000 m²/m³, mucho mayor que la de los otros dos medios. Además, el material de la esponja cuadrada es poliuretano, que se expande cuando se expone al agua, tiene una alta hidrofilicidad y favorece la adhesión y el crecimiento de microorganismos en el agua. Los resultados de la investigación de Li Yong et al. También demostró que el rendimiento de arranque-y el rendimiento de eliminación de nitrógeno amoniacal de la esponja de poliuretano fueron mejores que los del polipropileno, lo que concuerda con los resultados de este estudio. Además, en este estudio, el área de superficie específica de los medios de biofiltro Biochip fue de hasta 5500 m²/m³, mucho mayor que la de los medios de biofiltro de bolas de lecho fluidizado, pero el tiempo de formación de la biopelícula fue básicamente el mismo que el de los medios de bolas de lecho fluidizado. Esto puede estar relacionado con el tamaño de los poros. Algunos estudios han señalado que la escala espacial interna de los biofiltros afecta el crecimiento de las biopelículas. Aunque algunos medios de biofiltro tienen una gran superficie específica, sus poros son finos y el tamaño de los poros es mucho más pequeño que el espesor de la biopelícula madura, lo que puede provocar fácilmente el bloqueo de los poros, lo que dificulta que la biopelícula en los poros alcance la acumulación máxima. Los poros del Biochip son pequeños, lo que da como resultado un crecimiento de biopelículas más lento y un tiempo de formación de biopelículas más prolongado.
3.2 Composición de la comunidad microbiana de los medios de biofiltro y el agua de cultivo
En este estudio, las bacterias dominantes en los medios de biofiltro y en el agua de cultivo correspondiente eran diferentes. El índice de Shannon de las biopelículas en los medios de biofiltro fue mayor que el del agua de cultivo correspondiente, lo que indica que los medios de biofiltro tienen el efecto de enriquecer los microorganismos. Esto es consistente con los resultados de la investigación de Hu Gaoyu et al. Hay muchos factores que afectan la estructura de la comunidad microbiana, como el tipo de portador, la profundidad del filtro, la salinidad, la concentración de materia orgánica, etc. El mismo medio de biofiltro, bajo diferentes condiciones de cultivo, tendrá diferentes comunidades microbianas en la biopelícula. El autor una vez estudió la situación de formación de biopelículas de medios de biofiltro de bolas de lecho fluidizado en un sistema de acuicultura de recirculación para langostinos gigantes de agua dulce (Macrobrachium rosenbergii). Los resultados mostraron que el filo dominante en su biopelícula era Firmicutes, mientras que en este estudio, el filo dominante en la biopelícula de bolas de lecho fluidizado era Proteobacteria. La razón principal de esta diferencia puede ser los diferentes entornos de acuicultura. Los tres medios de biofiltro utilizados en este estudio tenían las mismas condiciones iniciales para cultivar biopelículas. Es posible que debido a las diferentes características físicas de los medios, el espesor de la biopelícula formada y el ambiente interno también fueran diferentes, lo que resultó en diferencias en las comunidades microbianas. Por lo tanto, la diferencia en los portadores es la razón principal de las diferencias en las comunidades microbianas. Además, durante el proceso de acuicultura, el entorno acuático y la comunidad microbiana se influyen mutuamente. Las razones de las diferencias en las comunidades microbianas pueden estar relacionadas con factores ambientales. Por ejemplo, la investigación de Yuan Cuilin indicó que el número total de bacterias heterótrofas en el cuerpo; Fan Tingyu et al. Se cree que el valor del pH puede afectar significativamente el contenido total de nitrógeno en el agua y juega un papel clave en la distribución de las comunidades de bacterias acuáticas en las secciones de los ríos interiores. El nitrógeno amoniacal, el fósforo total y la clorofila a también influyen en diversos grados en la composición de las comunidades bacterianas en la masa de agua. Los factores ambientales que causan las diferencias en la composición de la comunidad microbiana en este estudio aún necesitan mayor confirmación.
3.3 Efectos de diferentes medios de biofiltro sobre el crecimiento de la lobina negra
Según los resultados de crecimiento, la lobina negra en el grupo de esponjas cuadradas creció más rápido, con una tasa de aumento de peso significativamente mayor que la de los otros dos medios, y la tasa de conversión alimenticia más baja. Esto es consistente con resultados de investigaciones anteriores. En este estudio, la formación de biopelículas y la acuicultura se llevaron a cabo simultáneamente. A juzgar por el tiempo de formación de la biopelícula, la biopelícula de esponja cuadrada maduró antes y, después de que maduró la biopelícula, las concentraciones de nitrógeno amoniacal y nitrógeno nitrito en el agua siempre fueron más bajas que las de los otros dos medios. Además, la esponja cuadrada tiene cierta capacidad de filtración, el contenido de sólidos suspendidos en el agua de cultivo fue menor y el agua fue relativamente clara. El mejor crecimiento de la lobina negra en el grupo de las esponjas cuadradas puede estar relacionado con la buena calidad del agua. Sin embargo, los efectos de purificación de los medios de esponja cuadrados sobre el nitrógeno total, el fósforo total y el índice de permanganato en el agua necesitan más estudios. Vale la pena señalar que durante el experimento, el valor del pH mostró una tendencia general a la baja. Después de 12 días de cultivo, el valor de pH de todos los tanques de cultivo fue inferior a 6,0, lo que concuerda con los resultados de la investigación de Zhang Long et al. La disminución del valor del pH se debe a que se produce una gran cantidad de iones de hidrógeno durante el proceso de cultivo de la biopelícula, lo que lleva a una disminución del valor del pH del agua. Por lo tanto, durante el proceso de formación de biopelículas, es necesario ajustar rápidamente el valor del pH del agua del tanque de cultivo para garantizar que esté dentro del rango de crecimiento normal de las especies cultivadas. Considerando el costo económico, el precio de mercado de la esponja cuadrada es de 70~100 RMB/kg, y su costo se encuentra entre los otros dos medios de biofiltro. Combinado con los resultados de crecimiento, a corto plazo, la esponja cuadrada es un medio biofiltrante de tratamiento de agua relativamente práctico para la acuicultura con recirculación. Sin embargo, la esponja cuadrada tiene poca dureza y una vida útil corta. Sus efectos de uso-a largo plazo y sus efectos en la acuicultura necesitan mayor verificación.
En resumen,En condiciones naturales de formación de biopelículas, el medio de biofiltro de esponja cuadrada tiene el tiempo de formación de biopelícula más corto, un precio moderado y la masa corporal final y la tasa de aumento de peso de la lobina negra en el grupo de esponja cuadrada fueron significativamente más altos que los de los otros dos medios de biofiltro. A corto plazo, es un medio biofiltrante de tratamiento de agua relativamente práctico para la acuicultura con recirculación.